Microscopio biologico sul volume del blocco tissutale
Un microscopio biologico con condensatore può spostare il condensatore su e giù per moderare la luminosità e può anche modificare l'apertura dell'analizzatore a luce variabile per ottenere una luminosità moderata di 9b. Se la luce è al sole, il condensatore può essere sollevato in modo appropriato e l'apertura del rumore ottico variabile può essere ampliata in modo appropriato. Se la luce è troppo forte, il condensatore può essere abbassato opportunamente e l'apertura dell'intersezione può essere ridotta opportunamente. Se in questo caso ti senti ancora abbagliante, puoi scegliere un filtro appropriato e posizionarlo sulla staffa sotto il condensatore. Questo tussah può ottenere una luminosità che ti soddisfa. Naturalmente, è necessario acquisire esperienza dopo un certo periodo di pratica nella regolazione delle posizioni superiore e inferiore del condensatore per modificare la dimensione dell'apertura della lettura ottica e selezionare i filtri adatti.
Un problema molto importante del biomicroscopio è che il contenuto di 65 elementi in ciascuna parte dopo la liofilizzazione, l'inclusione in resina (FD) e la liofilizzazione deve essere maneggiato con cura, in modo da non danneggiare le cellule da osservare e analizzare. Poiché la microanalisi a raggi X non solo richiede molte fasi, ma è anche molto costosa, è molto deplorevole trarre una conclusione errata se le cellule analizzate sono cellule danneggiate o cellule morte dopo un trattamento a lungo termine e in più fasi. Ad esempio, le cellule del miocardio separate dal trattamento con collagenasi hanno due forme, una è lunga e l'altra è rotonda. Quest'ultima è una cellula morente che viene danneggiata durante la separazione cellulare.
Il contenuto e la distribuzione degli elettroliti in questi due tipi di cellule sono molto diversi al microscopio biologico. Il Na è molto elevato e il K è molto basso nelle cellule miocardiche rotonde, mentre la concentrazione di Ca nei dendriti lineari è molto elevata. Rispetto ad altri metodi analitici è dimostrato che l'alto Na e il basso K nelle cellule circolari e l'alto Ca nei mitocondri sono il risultato di un danno alla membrana cellulare durante la separazione cellulare. Il metodo di fissazione a freddo di cellule e tessuti consiste spesso nel fissarli prima mediante raffreddamento e quindi conservarli in azoto liquido. La fissazione dell'estinzione è molto importante per l'effetto di conservazione. Le cellule viventi o i tessuti freschi sono ricchi di acqua. Durante il quenching, accade spesso che le parti di cellule o tessuti che sono a diretto contatto con i crioprotettori (soprattutto durante il quenching con azoto liquido) vengano prima congelate e fissate, formando così un "guscio", che impedisce il congelamento e il fissaggio della parte centrale parte delle cellule. Pertanto, quando si effettua la microanalisi a raggi X, si scopre spesso che al centro delle cellule più grandi sono presenti cristalli di ghiaccio. Per evitare che ciò accada, come agente refrigerante viene utilizzata una sostanza con un punto di fusione superiore a quello dell'azoto liquido ma una temperatura di essiccazione inferiore a 806°C. Esistono molte sostanze simili, ma quella più facilmente disponibile è il propano concentrato (punto di ebollizione-42．120c, punto di fusione-187．10c, peso molecolare-44.1), che ha il velocità di raffreddamento più elevata. Ma il suo svantaggio è l'infiammabilità.
Il microscopio biologico può posizionare la fibra muscolare su un telaio speciale e quando la fibra muscolare si contrae in una determinata fase e deve essere fissata, l'ugello viene avviato immediatamente, in modo che il propano liquido venga spruzzato sulla fibra muscolare per dissetarla e fissarla Esso. Quindi, le fibre muscolari vengono rimosse insieme al rack e messe in azoto liquido. Se le cellule del sangue o le cellule separate vengono fissate, centrifugare prima a bassa velocità per concentrare le cellule, trasferire le cellule in una provetta d'argento con buona conduttività termica e mettere la provetta in propano liquido per il congelamento e il fissaggio. Durante il fissaggio del pancreas di ratto nel laboratorio Hall, due blocchi di acciaio sono stati preraffreddati con elio liquido (o azoto liquido) e due blocchi di rame sono stati posizionati davanti e dietro il pancreas con una pinza, in modo che gli zi fossero spenti e fissati. I tessuti o le cellule possono essere conservati per lungo tempo dopo essere stati raffreddati, fissati e trasferiti in azoto liquido.
